Conteneur cryogénique
Un conteneur cryogénique est un récipient hermétique conçu pour le transport de spécimens biologiques aux températures cryogéniques de la phase vapeur de l'azote liquide[1],[2].
Cet article est orphelin. Moins de trois articles lui sont liés ().
Fonction
modifierUn conteneur cryogénique possède deux composants principaux : un récipient interne et une enveloppe de protection. Le récipient interne, destiné à contenir des échantillons biologiques, se trouve dans la phase vapeur de l'azote liquide[1]. Cette configuration permet de maintenir les échantillons à des températures inférieures à -150 °C pendant des durées prolongées[2].
La capacité à éviter tout contact entre les échantillons et l'azote liquide est une caractéristique de ces conteneurs, réduisant ainsi les risques de contamination et assurant des conditions cryogéniques constantes pendant le transport[1].
Applications
modifierLes conteneurs cryogéniques sont utilisés dans divers secteurs des domaines scientifique et médical[1],[3]. En médecine reproductive, ces conteneurs facilitent le transport d'entités biologiques fragiles, notamment les ovules et les embryons humains[2]. Dans le domaine de la recherche, ils servent à transporter des échantillons tels que des spermatozoïdes ou des embryons préimplantatoires de souris génétiquement modifiées, préservant ainsi l'intégrité et la viabilité de ces ressources de recherche pendant leur transport[1],[4],[5]. De plus, les biobanques, qui conservent divers spécimens biologiques destinés à des recherches scientifiques ultérieures, utilisent des conteneurs cryogéniques pour expédier et recevoir des échantillons provenant de chercheurs du monde entier[3].
Alternative pour le transport des échantillons
modifierUne alternative courante aux emballages isothermes est l'utilisation de glace carbonique. Cette méthode permet de réduire le poids et le coût des colis en évitant les frais de retour, contrairement aux emballages isothermes. Cependant, la glace carbonique peut ne pas conférer une température suffisamment basse pour tous les échantillons à −80 °C. Par exemple, si les spermatozoïdes de souris cryoconservés peuvent supporter cette température pendant de courtes périodes sans perdre leur pouvoir fécondant, les embryons de souris cryoconservés nécessitent des environnements plus froids, comme ceux inférieurs à −150 °C utilisés dans les emballages isothermes, pour maintenir leur qualité[6],[7],[8]. Une autre méthode, utilisée par exemple pour les spermatozoïdes de souris lyophilisés, consiste à expédier les échantillons lyophilisés à température ambiante. Cette méthode peut être plus économique, mais de nombreux échantillons subissent une baisse de qualité notable après lyophilisation, ce qui en limite l'application[9].
Notes et références
modifier- 1 2 3 4 5 (en) Harrison, « Mice on the move », Lab Animal, vol. 50, no 9, , p. 233–235 (ISSN 0093-7355, PMID 34373647, DOI 10.1038/s41684-021-00829-5, S2CID 236968000)
- 1 2 3 (en) Chang, Bernal, Wright et Straub, « High survival rates of vitrified human oocytes are maintained after exposure to transport conditions in the vapor phase of liquid nitrogen in dry shipper for 60 hours », Fertility and Sterility, vol. 92, no 3, , S183 (DOI 10.1016/j.fertnstert.2009.07.1379)
- 1 2 (en) Nouvel, Laget, Duranton et Leroy, « Optimization of RNA extraction methods from human metabolic tissue samples of the COMET biobank », Scientific Reports, vol. 11, no 1, , p. 20975 (ISSN 2045-2322, PMID 34697345, PMCID 8545963, DOI 10.1038/s41598-021-00355-x, Bibcode 2021NatSR..1120975N)
- ↑ (en) Ramin, Bürger, Hörlein et Kerkau, « Stability of Cryopreserved Samples of Mutant Mice », Biopreservation and Biobanking, vol. 12, no 5, , p. 343–350 (ISSN 1947-5535, PMID 25340944, DOI 10.1089/bio.2014.0030, lire en ligne
) - ↑ (en) Takeo, Kaneko, Haruguchi et Fukumoto, « Birth of mice from vitrified/warmed 2-cell embryos transported at a cold temperature », Cryobiology, vol. 58, no 2, , p. 196–202 (PMID 19168045, DOI 10.1016/j.cryobiol.2008.12.011, lire en ligne )
- ↑ (en) Okamoto, Nakagata et Toyoda, « Cryopreservation and Transport of Mouse Spermatozoa at -79.DEG.C.. », Experimental Animals, vol. 50, no 1, , p. 83–86 (ISSN 1341-1357, PMID 11326428, DOI 10.1538/expanim.50.83, S2CID 84997032, lire en ligne)
- ↑ (en) Raspa, Guan, Paoletti et Montoliu, « Dry ice is a reliable substrate for the distribution of frozen mouse spermatozoa: A multi-centric study », Theriogenology, vol. 96, , p. 49–57 (PMID 28532839, DOI 10.1016/j.theriogenology.2017.04.003, lire en ligne )
- ↑ (en) Qiu, Matsukawa et Edashige, « Equilibrium vitrification of oocytes using low concentrations of cryoprotectants », Cryobiology, vol. 113, (PMID 37722470, DOI 10.1016/j.cryobiol.2023.104586, Bibcode 2023Cryob.11304586Q, S2CID 262027766)
- ↑ (en) Ito, Wakayama, Emura et Ooga, « Mailing viable mouse freeze-dried spermatozoa on postcards », iScience, vol. 24, no 8, (PMID 34471856, PMCID 8390851, DOI 10.1016/j.isci.2021.102815, Bibcode 2021iSci...24j2815I)
