Rouille (maladie)

Les rouilles sont un ensemble de maladies cryptogamiques des plantes vasculaires dont les agents pathogènes responsables sont des champignons basidiomycètes (Fungi) de l'ordre des Pucciniales (anciennement Uredinales) et plus largement appartenant à la sous-division des Pucciniomycotina.

Ces champignons phytopathogènes sont des parasites obligatoires biotrophes, ne pouvant se développer que sur un végétal vivant, et dont les espèces sont hautement spécialisées. Elles se manifestent par des taches ou des pustules apparaissant sur les feuilles. Le cycle de vie de ces champignons est complexe : lorsqu'il est complet, il caractérisé par l’émission temporaire et successive de cinq types de spores naissant dans des structures différentes sur des organes annuels comme les feuilles et les tiges, plus rarement sur des organes vivaces comme les troncs ou les racines. Il est également caractérisé par des changements d'hôte souvent très éloignées les uns des autres du point de vue phylogénique, comme par exemple les graminées et les arbres.

Les champignons de la rouille sont très répandus et se rencontrent régulièrement. Ils sont surtout visibles en été et en automne dans leur stade écidie (I) et urédie (II), le plus souvent orange vif. Afin de déterminer l'espèce et le stade de développement, il est souvent indispensable d'utiliser un microscope afin d'étudier les spores. En effet, la classification des champignons de la rouille se base sur leur forme, leur couleur, leur taille et leur ornementation ainsi que la présence ou l'absence de papilles, de pores germinatifs ou de pédoncules. De plus, certaines espèces comme celles du genre Melampsora forment des éléments stériles appelés paraphyses, dont la forme, la taille et l'épaisseur de la paroi sont également importantes pour la détermination^[1].

Parmi les espèces à l'impact agricole majeur se trouvent notamment Puccinia graminis, agent de la rouille noire, Puccinia striiformis, agent de la rouille jaune du blé et Puccinia recondita, agent de la rouille brune du blé dont les hôtes principaux sont, pour ces trois espèces, de nombreuses céréales comme le blé, l'orge et l'avoine alors que l'hôte intermédiaire est principalement l'Épine-vinette. Se rencontrent également Uromyces betae, agent de la rouille de la betterave avec pour hôtes uniques la Bette maritime et les betteraves cultivées ; Melampsora lini, agent de la rouille du lin avec pour hôte unique le Lin cultivé ; Puccinia asparagi, agent de la rouille de l'asperge avec pour hôte unique l'Asperge.

Parmi les espèces sauvages communes en Europe occidentale se trouvent par exemple Coleosporium tussilaginis dont l'hôte principal est le tussilage et l'hôte secondaire un pin ; Puccinia lagenophorae dont le cycle de vie a lieu uniquement sur le même hôte comme la pâquerette ou le séneçon commun ; Puccinia malvacearum uniquement sur une Malvacée, Puccinia poarum sur le tussilage comme hôte principal et les graminées du genre Poa comme hôtes intermédiaires et Puccinia taraxaci uniquement sur le pissenlit^[1].

Par analogie, certaines maladies dues au genre Albugo, un Oomycètes, sont appelées rouille blanche comme la rouille blanche des crucifères et la rouille blanche de la patate douce. Cependant, elles correspondent à des symptômes différents et à un cycle de vie différent des rouilles dues aux Pucciniales.

Histoire

Écidie (I) d'*Uromyces dactylidis* sur une feuille de Dactyle aggloméré.

Les rouilles affectent l'agriculture depuis que l'homme a commencé à tenter de dompter les plantes pour les cultiver, en particulier les céréales telles que le blé et l'orge^[2].

Des preuves archéologiques démontrent que les cultures de céréales galloromaines étaient constamment touchées par des rouilles et mildious.
Au IV^e siècle, les Romains sacrifiaient des bovins roux, des renards et des chiens au dieu Robigus en espérant qu'il éloigne les épidémies de rouilles de céréale des cultures^[2].

Ces pathogènes fongiques sont mieux connus et l'on commence à comprendre comment ils peuvent contourner le système immunitaire de la plante via la sécrétion de petites protéines dites « effectrices ». On espère que mieux connaître ces effecteurs et leurs mécanismes permettra de mieux anticiper la propagation mondiale des rouilles du blé^[2] et leur adaptation aux pesticides.

Cycle de vie des champignons de la rouille

Le cycle de vie des espèces de champignons agents des rouilles est unique dans le règne fongique. En effet, le développement complet d'une seule espèce comprend souvent jusqu'à cinq stades différents, désignés par des chiffres romains. Cependant certaines espèces raccourcissent leur cycle de développement en supprimant quelques stades. Une autre particularité est le changement d'hôtes qu'effectuent certaines espèces. Les spermogonies (0) et les écidies (I) sont des stades haploïdes formés sur l'hôte intermédiaire et les urédies (II) et les télies (III) sont des stades diploïdes formés sur l'hôte principal. Le changement se fait alors entre des plantes-hôtes souvent très éloignées les unes des autres du point de vue taxonomique, comme par exemple les graminées tel le blé et l'Épine-vinette dans le cas de la rouille noire causée par Puccinia graminis. Le changement d'hôte permet en outre aux champignons de la rouille de coloniser des habitats écologiques totalement différents à l'instar d'une prairie et d'une forêt^[1]^,^[3].

Description de chaque phase

Spermogonie

Les spermogonies (0) sont généralement rondes, coniques ou en forme de pustule, de couleur jaune, orange ou foncée, se trouvent régulièrement sur le dessus des feuilles et dégagent souvent des odeurs particulière comme spermatique, douceâtre, moisie, , etc.^[1]^,^[3].

Écidie

Les écidies (I), qui sont un stade asexué, ont différentes morphologies : type Aecidium, type Caeoma, type Peridermium et type Roestelia. Le type Aecidium est le plus commun ; ses écidies se présentent sous la forme de gobelet ou de tonneau, de couleur jaune orangé, plus rarement blanche. Cette forme est due à une enveloppe protectrice, plus précisément un pseudo-péridium, qui peut être réfléchie à son extrémité et qui est souvent effilochée. Ces structures sont formées sur les organes végétaux les plus divers et peuvent y provoquer des galeries ou des déformations massives. Le type Caeoma qui se retrouve dans le genre Melampsora, est dépourvu de cette marge et n'est protégé que par les tissus de l'hôte. C'est pourquoi ses structures sont en forme de pustule. Il est généralement jaune ou orange. Dans le type Peridermium des genres Coleosporium et Chrysomyxa, les écidies ont un aspect vésiculeux lorsque le péridium est fermé. Le type Roestelia qui se retrouve dans le genre Gymnosporangium présente des écidies orangé brunâtre en forme de corne due à un long pseudo-péridium^[1]^,^[3].

Urédie

Les urédies (II) sont un stade asexué des champignons de la rouille qui peuvent infecter en très peu de temps de grandes surfaces d'une population d'hôtes. Chez les genres très communs Puccinia et Uromyces, les urédies se développent de part et d'autre des feuilles sur des taches foliaires plus ou moins voyantes et bombées, sous forme de pustules brun-cannelle ou brun-rouille, qui se couvrent précocement. Elles sont également disposées en anneau. Mais elles peuvent aussi être jaunâtres à orange vif sous forme de coussinets comme chez Melampsora et Coleosporium ou sous forme de pustules comme chez Pucciniastrum. Les urédies blanches du genre Milesina, dont les hôtes sont des fougères, constituent une particularité. Certaines espèces comme Triphragmium ulmariae produisent des urédies primaires et secondaires qui diffèrent par leurs caractéristiques macroscopiques et microscopiques^[1]^,^[3].

Télie

Les télies (III), qui constituent un stade sexué du cycle de vie des Pucciniales, sont généralement en forme de sore, de couleur brun noir à brun. Elles sont produites sur les feuilles et les tiges et y provoquent régulièrement des malformations. Mais il existe aussi des formes recouvertes par l'épiderme qui prennent un coloration plomb. Il se trouve également des sores brillantes et croûteuses, rouge foncé comme chez Coleosporium ou orange à brunes comme chez Malanspora. Le genre Cronartium forme des télies étroites, cornées ou filamenteuses, brun foncé ; le genre Gymnosporangium forme des fructifications gélatineuses cornées ou en forme de langue ; le genre Microbotryum, souvent désigné comme faux-charbon, se présente sous forme de masse de spores poussiéreuses noir-violet ou brun clair dans différents organes floraux et plus rarement sur les feuilles et les tiges. En raison de leur aspect charbonneux, il a longtemps été considéré comme un véritables agent du charbon. Les champignons de la rouille hivernent sous forme de téliospores^[1]^,^[3].

Baside

Les basides (IV) germent à partir des téliospores et sont reconnaissables à la couche blanchâtre ressemblant à du givre qu'elles forment sur les télies. C'est sur elles que se forment les basidiospores. Il est rare d'observer sur le terrain la formation de basides^[1]^,^[3].

Vocabulaire

Lorsqu'une espèce effectue un cycle complet comprenant les stades 0, I, II, III, IV, la rouille est dite macrocycle ; lorsque les urédies (II) font défaut, la rouille est dite hémicyclique et lorsque le cycle ne comporte que des serpomogonies (0) et des télies (III) ou uniquement des télies (III), la rouille est dite microcyclique^[4].

Une rouille est autoxène lorsque son cycle biologique s'accomplit sur la même plante-hôte comme Puccinia menthae sur la Menthe des champs, où les stades 0, I, II, III sont présents. Une rouille est hétéroxène lorsque ses écidies (I) se forment sur une plante d'un genre donné tandis que ses autres stades évolutifs apparaissent obligatoirement sur une seconde plante de genre différent du premier comme Puccinia graminis dont les stades 0 et I se font sur l'Épine-vinette et les stades II et III sur le blé^[4].

Cycle de vie type

Au printemps, la basidiospore (IVsp.) issue de la téliospore (IIIsp.) hivernale germe au contact de l’hôte sur lequel elle est transportée par le vent, la pluie ou les insectes. Après infection, le champignon provoque l’apparition d’une tache foliaire. Un filament mycélien haploïde de valence sexuelle - ou + naît directement de la basidiospore qui produit une spermogonie (0) odorante sur le dessus de la feuille. Ses spermaties (0sp.) s'agglutinent dans une gouttelette de miellat qui recouvre l'ostiole qui la surmonte. Les spermaties sont alors transférées par des insectes attirés par le miellat et l'odeur sur un hyphe récepteur proéminent d'une autre spermogonie qui achemine son noyau jusqu'à une protocécidie de valence sexuelle opposée généralement située de l'autre côté sur la face inférieure de la feuille, ce qui provoque sa fertilisation et la transforme en une écidie véritable (I). C'est le début de la dicaryotisation^[4]^,^[5].

Le développement, toujours printanier, de l'écidie (I) est très rapide. Protégée par son enveloppe protectrice, elle génère des écidiospores (Isp.) qui contiennent deux noyaux haploïdes. Les espèces pratiquant le changement d'hôte le font principalement lors de la dissémination des écidiospores (Isp.)^[4]^,^[5].

Cette écidiospore (Isp.) germe sur la plante et un mycélium se développe rapidement en une urédie (II) qui contient des urédospores (IIsp.). Celles-ci germent directement et généralisent l'infection sur la plante en dispersant la maladie de façon exponentielle^[4]^,^[5].

Des télies (III) estivales et automnales en forme de pustules, de coussinets ou de cornes apparaissent sur le mycélium et produisent des spores particulières : les deux noyaux haploïdes jusqu'ici séparés s'unissent pour donner la téliospore (IIIsp.). Elles sont munies d'un pédicelle hyalin et contiennent une ou plusieurs protobasides. C'est la fin de la dicaryotisation. Ce sont ces spores à la paroi renforcée qui permettent au champignon de passer l'hiver^[4]^,^[5].

Les protobasides de chaque téliospores germent. Se développent un mycélium court et le noyau de la protobaside qui se divise par méïose en quatre noyau haploïdes pour donner une véritable baside (IV). Elle produit une basidiospore (IVsp.) qui n'est pas capable d'infester l'hôte principal mais qui contamine l'hôte secondaire printanier en étant disséminée par le vent, l'eau ou les insectes^[4]^,^[5].

Biologie

Les rouilles sont provoquées par des champignons produisant en abondance des spores de 5 à 10 µm de diamètre en moyenne, de couleur claire, hyalines le plus souvent, jaune orangées, légèrement verdâtres ou brunâtres (couleurs caractéristiques à l’origine de la dénomination de ces maladies), parfois mélanisées à des degrés variables, surtout chez les spores de résistance, la mélanine qui indure leur paroi ayant des propriétés antilytiques qui leur permet de passer la mauvaise saison^[6].

La plupart des spores sont éjectées dans l'air (autochorie) dans le but de les éloigner « de la colonie mère et de favoriser la dispersion en traversant la zone calme laminaire (quelques millimètres), qui entoure la surface de tout objet, pour tomber dans la zone turbulente. » Les autres facteurs de dispersion sont la distance ; la déposition : les petites spores sont dispersées par le vent (anémochorie, mode de dispersion le plus fréquent, les spores pouvant parcourir des milliers kilomètres) ou les gouttes de pluie (effet splash caractéristique de l'ombrochorie (de)), les plus grosses tombent par gravitation (barochorie) ; l'impaction (en) ; potentiel d'inoculation (vitesse de la germination, abondance de spores, capacité de surmonter les compétiteurs, etc.) qui dépend des réserves nutritives contenues dans la spore^[7]. La dispersion des spores par les graines de plantes est plus fréquente qu'on ne l'imagine^[8], de même que celle par l'homme (anthropochorie), agent de propagation de plus en plus efficace^[9].

Principaux genres européens

Chrysomyxa : l'écidie (I) est de type peridermium. Ses écidospores (Isp.), urédospores (IIsp.) et téliospores (IIIsp.) ne sont pas pédonculées et sont formées en chaînes. À l'exception du genre Coleosporium, tous les autres présentent des urédospores (IIsp.) pédonculées. Ce genre présente typiquement un cycle entre les aiguilles ou les cônes de Picea et les Ericaceae. Exemple : Chrysomyxa rhododendri^[3].
Coleosporium : l'écidie (I) est de type peridermium. les urédospores (IIsp.) sont similaires à celle de Chrysomyxa. La télie (III) est située sous l'épiderme et forme des croûtes cireuses rouge vif. Ce genre présente typiquement un cycle entre les aiguilles de Pinus et des angiospermes, surtout des Astéracées. Exemple : Coleosporium asterum^[3].
Cronartium : l'écidie (I) est de type peridermium. L'urédie (II) présente un péridium et la télie (III) forme des colonnes. Ce genre présente typiquement un cycle entre le tronc et les rameaux de Pinus et divers angiospermes. Exemple : Cronartium ribicola^[3].
Gymnosporangium : l'écidie (I) est de type Roestelia. La spermogonie (0) et l'écidie (I) sont remarquables. les écidiospores (Isp.) sont grandes et présentent une paroi épaisse et des pores germinatifs évidents. L'urédie (II) ne se forme pas, à une exception près. La télie (III) est grande, orange vif à rougeâtre, gélatineuse et gonfle à l'humidité. Les téliospores (IIIsp.) présentent un long pétiole et deux cellules. Elles germent immédiatement. Ce genre présente typiquement un cycle entre l'écidie (I) du début de l'été à l'automne sur les feuilles ou fruits des fruitiers à pépins et la télie (III) au printemps sur les troncs, rameaux ou aiguilles de Juniperus. Exemple : Gymnosporangium clavariiforme^[3].
Melampsora : l'écidie (I) est de type Caeoma. L'urédie (II) est orange clair. la télie (III) forme des croûtes sous l'épiderme. Ce genre présente typiquement un cycle entre divers gymnospermes ou angiospermes et des Salicaceae comme les Peupliers ou les Saules. Quelsues espèces sur gymnospermes ne changent pas d'hôte. Exemple : Melampsora euonymi-caprearum^[3].
Melampsoridium : l'écidie (I) est de type péridermium. L'urédie (II) présente un péridium et des pores ouverts. Les urédospres (IIsp.) sont incolores et à pores germinaux. La télie (III) est située sous l'épiderme. Ce genre présente typiquement un cycle entre les aiguilles de Mélèze et les Betulaceae. Exemple : Melampsoridium carpini^[3].
Milesina : l'écidie (I) est de type péridermium. L'urédie (II) présente un péridium. Les urédospores (IIsp.) ont un pédoncule court et une paroi incolore. Les téliospores (IIIsp.) sont sans pédoncule et multicelulaires avec des parois verticales. Ce genre présente typiquement un cycle entre les aiguilles de Sapins Abies et les fougères. Exemple : Milesina dieteliana sur Polypodium^[3].
Phragmidium : l'écidie (I) est de type Caeoma et présente comme l'urédie (II) des paraphyses incolores. Leurs spores (Isp. et IIsp.) sont verruqueuses. La télie (III) est généralement noire et les téliospores (IIIsp.) ont un long pédoncule et sont multicellulaires. Ce genre se développe sur des Rosacées sans effectuer de changement d'hôte. Exemple : Phragmidium mucronatum sur Rosa canina^[3].
Puccinia : l'écidie (I) est de type aecidium. Les urédospores (IIsp.) présentent des pores germinaux. Les téliospores (IIIsp.) sont pédonculées, généralement à 2 cellules, nettement épaissies au sommet et présentent un pore germinatif par cellule. Tous les stades de développement sont répandus sur de nombreux angiospermes. Exemple : Puccinia pulverulenta sur Epilobium hirsutum^[3].
Pucciniastrum : l'écidie (I) est de type péridermium. L'urédie (II) est située au dessus de l'épiderme et présente une péridie. La télie (III) produit des croûtes sous-épidermiques. Les téliospores (IIIsp.) sont serrés les unes contre les autres et présentent deux à plusieurs cellules cloisonnées. Ce genre présente typiquement un cycle entre les aiguilles de sapin et les Onagraceae ou les Ericaceae. Exemple : Pucciniastrum areolatum^[3].
Tranzschelia : l'écidie (I) est de type aecidium. Les urédospores présentent (IIsp.) une paroi lisse épaissie au sommet. Les téliospores (IIIsp.) se présentent par deux et sont semblables à celles de Puccinia, mais se séparent légèrement. Leur paroi est généralement verruqueuse ou épineuse. Ce genre se trouve sur les Renonculacées sur lesquelles il effectue un cycle complet ou change d'hôtes avec les fruitiers à noyau. Exemple : Tranzschelia discolor sur Prunus domestica^[3].
Uromyces : similaire au genre Puccinia, mais produit des téliospores (IIIsp.) à une seule cellule. Exemple : Uromyces ficariae^[3].

Traitements

Les moyens de lutte contre les rouilles furent longtemps cantonnés à la tentative d'éradication des hôtes écidiens.

Traitements naturels

Le traitement classique consiste à supprimer puis brûler les feuilles atteintes et à pulvériser préventivement de la bouillie bordelaise ou avec une décoction de prêle, qui est aussi curative et utilisée en potager bio^[10]^,^[11]^,^[12].

La méthode de lutte en agriculture biologique consiste à planter des cultivars résistants ou, à défaut, d'augmenter la distance entre les rangées de plants et d'orienter celles-ci pour que l'humidité stagnante soit limitée par une exposition judicieuse aux vents dominants^[13].

Traitements phytosanitaires

L'arsenal phytopharmaceutique actuel est plus efficace avec les molécules^[14]:

Note: Certains de ces produits ne sont plus autorisés à la vente en Europe, et ne peuvent l'être que sur certaines espèces cultivées.

Liste des maladies appelées « rouilles » en français


Nom de la maladie	Agent pathogène	code OEPP
fausse rouille du mûrier	Mycosphaerella mori	MYCOMO
rouille américaine du groseillier	Endocronartium pini	ENDCPI
rouille américaine du soja	Phakopsora meibomiae	PHAKME
rouille asiatique du groseillier	Cronartium ribicola	CRONRI
rouille asiatique du soja	Phakopsora pachyrhizi	PHAKPA
rouille blanche de la patate douce	Albugo ipomoeae-panduratae	ALBUIP
rouille blanche de la scorsonère	Albugo tragopogonis	ALBUTR
rouille blanche de l'épinard	Albugo occidentalis	ALBUOC
rouille blanche des composées	Albugo tragopogonis	ALBUTR
rouille blanche des crucifères	Albugo candida	ALBUCA
rouille blanche du chrysanthème	Puccinia horiana	PUCCHN
rouille blanche du salsifis	Albugo tragopogonis	ALBUTR
rouille blanche du tournesol	Albugo tragopogonis	ALBUTR
rouille brune	Puccinia recondita	PUCCRE
rouille brune de l'orge	Puccinia hordei	PUCCHD
rouille brune du blé	Puccinia triticina	PUCCRT
rouille brune du chrysanthème	Puccinia chrysanthemi	PUCCCH
rouille brune du haricot	Uromyces appendiculatus	UROMAP
rouille brune du seigle	Puccinia recondita f. sp. recondita	PUCCRR
rouille commune de la pomme de terre	Puccinia pittieriana	PUCCPT
rouille commune du chrysanthème	Puccinia chrysanthemi	PUCCCH
rouille commune du trèfle	Uromyces trifolii	UROMTR
rouille courbeuse des rameaux du pin	Melampsora pinitorqua	MELMPP
rouille couronnée de la bourdaine	Puccinia coronata f. sp. calamagrostidis	PUCCCM
rouille couronnée de la fétuque	Puccinia coronata f. sp. festucae	PUCCCF
rouille couronnée de l'agrostide	Puccinia coronata f. sp. agrostidis	PUCCCG
rouille couronnée de l'avoine	Puccinia coronata	PUCCCO
rouille couronnée de l'avoine	Puccinia coronata f. sp. avenae	PUCCCA
rouille couronnée des graminées	Puccinia coronata	PUCCCO
rouille couronnée du ray-grass	Puccinia coronata f. sp. lolii	PUCCCL
rouille couronnée du vulpin	Puccinia coronata f. sp. alopecuri	PUCCCC
rouille crustacée du framboisier	Pucciniastrum americanum	PUCIAM
rouille de la betterave	Uromyces betae	UROMBE
rouille de la bruyère	Thekopsora fischeri	THEKFI
rouille de la canne à sucre	Puccinia kuehnii	PUCCKU
rouille de la canne à sucre	Puccinia melanocephala	PUCCML
rouille de la chicorée	Puccinia hieracii	PUCCHI
rouille de la cinéraire	Coleosporium tussilaginis f. sp. senecionis	COLSSE
rouille de la crotalaire	Uromyces decoratus	UROMDE
rouille de la fétuque	Uromyces dactylidis	UROMDA
rouille de la feuille du caféier	Hemileia vastatrix	HEMIVA
rouille de la fève	Uromyces viciae-fabae	UROMVF
rouille de la laitue	Puccinia hieracii	PUCCHI
rouille de la luzerne	Uromyces striatus	UROMST
rouille de la menthe	Puccinia menthae	PUCCME
rouille de la pivoine	Cronartium flaccidum	CRONFL
rouille de la raiponce	Coleosporium tussilaginis	COLSCP
rouille de la reine des prés	Triphragmium ulmariae	TPHRUL
rouille de la rhubarbe	Puccinia phragmitis	PUCCPH
rouille de la scabieuse	Puccinia verruca	PUCCVE
rouille de la tige	Puccinia graminis	PUCCGR
rouille de la tige de l'airelle	Pucciniastrum goeppertianum	PUCIGO
rouille de la tige de l'avoine	Puccinia graminis f. sp. avenae	PUCCGA
rouille de la tige de l'orge	Puccinia graminis f. sp. secalis	PUCCGS
rouille de la tige du blé	Puccinia graminis f. sp. tritici	PUCCGT
rouille de la tige du mil	Puccinia graminis subsp. graminicola	PUCCGM
rouille de la tige du seigle	Puccinia graminis f. sp. secalis	PUCCGS
rouille de la vigne	Phakopsora euvitis	PHLLAM
rouille de l'abricotier	Tranzschelia pruni-spinosae	TRANPS
rouille de l'ail	Puccinia allii	PUCCAL
rouille de l'aloès	Uromyces aloes	UROMAL
rouille de l'amandier	Melampsora amygdalinae	MELMAM
rouille de l'amandier	Tranzschelia pruni-spinosae	TRANPS
rouille de l'anémone pulsatille	Coleosporium tussilaginis f. sp. pulsatillae	COLSPU
rouille de l'arachide	Puccinia arachidis	PUCCAR
rouille de l'asperge	Puccinia asparagi^[13]	PUCCAS
rouille de l'aster	Puccinia asteris	PUCCAT
rouille de l'aubépine	Gymnosporangium clavariiforme	GYMNCF
rouille de l'aubépine	Gymnosporangium confusum	GYMNCO
rouille de l'aubépine	Gymnosporangium globosum	GYMNGL
rouille de l'aubergine	Puccinia substriata	PUCCSU
rouille de l'endive	Puccinia hieracii	PUCCHI
rouille de l'épilobe du feu sur sapin	Pucciniastrum epilobii f. sp. abieti-chamaenerii	PUCIEA
rouille de l'hortensia	Pucciniastrum hydrangeae	PUCIHY
rouille de l'œillet	Puccinia arenariae	PUCCAE
rouille de l'œillet	Uromyces dianthi	UROMDI
rouille de l'Oregon des rosacées	Gymnosporangium juniperinum	GYMNJU
rouille de Plowright du poirier	Gymnosporangium confusum	GYMNCO
rouille de Virginie du poirier	Gymnosporangium globosum	GYMNGL
rouille de Virginie du pommier	Gymnosporangium juniperi-virginianae	GYMNJV
rouille des aiguilles de l'épicéa	Chrysomyxa abietis	CHMYAB
rouille des aiguilles de l'épicéa	Chrysomyxa weirii	CHMYWE
rouille des alliacées sur peuplier	Melampsora allii-populina	MELMAP
rouille des arbres fruitiers à noyau	Tranzschelia pruni-spinosae	TRANPS
rouille des euphorbiacées	Melampsora ricini	MELMRI
rouille des feuilles de bouleau	Melampsoridium betulinum	MELDBE
rouille des feuilles du blé	Puccinia triticina	PUCCRT
rouille des feuilles du cotonnier	Puccinia schedonnardi	PUCCSC
rouille des feuilles du mûrier	Mycosphaerella mori	MYCOMO
rouille des feuilles du peuplier	Melampsora medusae	MELMME
rouille des feuilles du seigle	Puccinia recondita f. sp. recondita	PUCCRR
rouille des iris	Puccinia iridis	PUCCIR
rouille des malvacées	Puccinia malvacearum ^[15]	PUCCMA
rouille des nervures du trèfle	Uromyces striatus	UROMST
rouille des ombellifères	Puccinia pimpinellae	PUCCPI
rouille des rameaux du pin	Cronartium filamentosum	CRONFI
rouille des rosacées	Phragmidium tuberculatum	PHRATU
rouille du balisier	Puccinia thaliae	PUCCTH
rouille du bananier	Uromyces musae	UROMMU
rouille du buis	Puccinia buxi
rouille du caféier	Hemileia vastatrix	HEMIVA
rouille du carthame	Puccinia carthami	PUCCCR
rouille du carvi	Puccinia bistortae	PUCCCB
rouille du céleri	Puccinia apii	PUCCAP
rouille du cerisier	Puccinia cerasi	PUCCCE
rouille du cerisier	Pucciniastrum areolatum	PUCIAR
rouille du chrysanthème	Puccinia chrysanthemi ^[15]	PUCCCH
rouille du cognassier	Gymnosporangium clavipes	GYMNCL
rouille du collet	Puccinia coronata	PUCCCO
rouille du cotonnier	Phakopsora gossypii	PHAKGO
rouille du cotonnier	Puccinia cacabata	PUCCSK
rouille du crocus	Puccinia croci	PUCCCI
rouille du crocus	Uromyces croci	UROMCR
rouille du cytise	Uromyces laburni	UROMLA
rouille du cytise	Uromyces laburni f. sp. genistae-tinctoriae	UROMLG
rouille du dactyle	Uromyces dactylidis	UROMDA
rouille du dolique	Uromyces dolicholi	UROMDO
rouille du figuier	Cerotelium fici	KUEHFI
rouille du framboisier	Phragmidium rubi-idaei	PHRARU
rouille du fuchsia	Pucciniastrum epilobii	PUCIEP
rouille du fuchsia	Pucciniastrum epilobii f. sp. palustris	PUCIEL
rouille du fusain sur saule marsault	Melampsora epitea f. sp. euonymi-capraearum	MELMEP
rouille du genêt d'Angleterre	Uromyces laburni f. sp. anglicae	UROMLN
rouille du genêt des teinturiers	Uromyces laburni f. sp. genistae-tinctoriae	UROMLG
rouille du genévrier	Gymnosporangium juniperi-virginianae	GYMNJV
rouille du géranium	Uromyces geranii	UROMGE
rouille du glaïeul	Puccinia gladioli	PUCCGL
rouille du glaïeul	Uromyces gladioli	UROMGL
rouille du glaïeul	Uromyces transversalis ^[15]	UROMTV
rouille du goyavier	Puccinia psidii	PUCCPS
rouille du grand chiendent	Puccinia cynodontis	PUCCCY
rouille du groseillier	Puccinia ribis	PUCCRI
rouille du groseillier sur l'osier	Melampsora ribesii-viminalis	MELMRV
rouille du haricot	Uromyces appendiculatus	UROMAP
rouille du laiteron	Coleosporium tussilaginis f. sp. sonchi	COLSSO
rouille du lin	Melampsora lini	MELMLI
rouille du lin	Melampsora lini var. liniperda	MELMLL
rouille du mahonia	Uropyxis mirabilissima	CUMMMI
rouille du maïs	Puccinia polysora	PUCCPY
rouille du maïs	Puccinia sorghi	PUCCSO
rouille du manioc	Uromyces manihotis	UROMMA
rouille du mélèze sur peuplier	Melampsora larici-populina	MELMLP
rouille du millet	Puccinia substriata	PUCCSU
rouille du muflier des jardins	Puccinia antirrhini ^[15]	PUCCAN
rouille du mûrier	Cerotelium fici	KUEHFI
rouille du néflier	Gymnosporangium confusum	GYMNCO
rouille du pâturin	Puccinia poarum	PUCCPR
rouille du pâturin	Uromyces dactylidis var. poae	UROMDP
rouille du pêcher	Puccinia cerasi	PUCCCE
rouille du pêcher	Tranzschelia discolor	TRANDI
rouille du pêcher	Tranzschelia pruni-spinosae	TRANPS
rouille du pélargonium	Puccinia pelargonii-zonalis	PUCCPZ
rouille du pélargonium zonal	Puccinia pelargonii-zonalis	PUCCPZ
rouille du persil	Puccinia nitida	PUCCNI
rouille du persil	Puccinia rubiginosa	PUCCRU
rouille du peuplier	Melampsora larici-populina	MELMLP
rouille du peuplier	Melampsora populnea	MELMPO
rouille du peuplier sur la mercuriale	Melampsora rostrupii	MELMPR
rouille du peuplier sur le mélèze	Melampsora larici-tremulae	MELMPL
rouille du pin	Cronartium comandrae	CRONCO
rouille du pin à cinq feuilles	Cronartium ribicola	CRONRI
rouille du pin du Lord	Cronartium ribicola	CRONRI
rouille du pin Weymouth	Cronartium ribicola	CRONRI
rouille du pistachier	Pileolaria terebinthi	UROMTE
rouille du poireau	Puccinia porri	PUCCPO
rouille du poirier japonais	Gymnosporangium asiaticum	GYMNAS
rouille du poirier japonais	Gymnosporangium haraeanum	GYMNHA
rouille du pois	Uromyces pisi	UROMPS
rouille du pois	Uromyces viciae-fabae	UROMVF
rouille du pois à vache	Uromyces vignae	UROMVI
rouille du pois cajan	Uredo cajani	UREDCA
rouille du pois-chiche	Uromyces ciceris-arietini	UROMCA
rouille du prunier	Tranzschelia pruni-spinosae	TRANPS
rouille du rhododendron	Chrysomyxa ledi var. rhododendri	CHMYRH
rouille du ricin	Melampsora ricini	MELMRI
rouille du roseau	Puccinia phragmitis	PUCCPH
rouille du rosier	Phragmidium mucronatum	PHRAMU
rouille du salsifis	Puccinia jackyana	PUCCJA
rouille du sapin	Pucciniastrum goeppertianum	PUCIGO
rouille du sarrasin	Coleosporium tussilaginis f. sp. melampyri	COLSME
rouille du saule argenté	Melampsora salicis-albae	MELMSA
rouille du soja	Phakopsora pachyrhizi	PHAKPA
rouille du sorgho	Puccinia purpurea	PUCCPU
rouille du teck	Olivea tectonae	OLIVTE
rouille du tournesol	Puccinia helianthi	PUCCHE
rouille du trèfle	Uromyces trifolii	UROMTR
rouille écidienne du groseillier	Puccinia caricina var. pringsheimiana	PUCCCP
rouille écidienne du groseillier	Puccinia ribesii-caricis	PUCCRC
rouille en colonnettes du cassissier	Cronartium ribicola	CRONRI
rouille européenne du poirier	Gymnosporangium sabinae	GYMNFU
rouille européenne du pommier	Gymnosporangium juniperinum	GYMNJU
rouille européenne du pommier	Gymnosporangium tremelloides	GYMNTR
rouille grillagée du poirier	Gymnosporangium sabinae^[16]	GYMNFU
rouille grillagée du pommier	Gymnosporangium juniperinum	GYMNJU
rouille grillagée du pommier	Gymnosporangium tremelloides	GYMNTR
rouille grise de la feuille du caféier	Hemileia coffeicola	HEMICO
rouille japonaise du chrysanthème	Puccinia horiana	PUCCHN
rouille japonaise du pommier	Gymnosporangium yamadae	GYMNYA
rouille jaune de l'orge	Puccinia striiformis	PUCCST
rouille jaune des graminées	Puccinia striiformis	PUCCST
rouille jaune du blé	Puccinia striiformis	PUCCST
rouille jaune du dactyle	Puccinia striiformis var. dactylidis	PUCCSD
rouille jaune du framboisier	Phragmidium rubi-idaei	PHRARU
rouille jaune du pâturin	Puccinia brachypodii var. poae-nemoralis	PUCCBP
rouille jaune du pâturin	Puccinia striiformis	PUCCST
rouille jaune du seigle	Puccinia striiformis	PUCCST
rouille jaune striée de l'orge	Puccinia striiformis	PUCCST
rouille jaune striée du blé	Puccinia striiformis	PUCCST
rouille jaune tardive du framboisier	Pucciniastrum americanum	PUCIAM
rouille linéaire des céréales	Puccinia graminis	PUCCGR
rouille naine de l'orge	Puccinia hordei	PUCCHD
rouille naine des feuilles de l'orge	Puccinia hordei	PUCCHD
rouille noire	Puccinia graminis^[17] (Ug99)	PUCCGR
rouille noire de la fléole	Puccinia graminis subsp. graminicola	PUCCGM
rouille noire de l'agrostide	Puccinia graminis subsp. graminicola	PUCCGM
rouille noire de l'avoine	Puccinia graminis f. sp. avenae	PUCCGA
rouille noire des céréales	Puccinia graminis	PUCCGR
rouille noire des ronces	Phragmidium bulbosum	PHRABU
rouille noire des ronces	Phragmidium violaceum	PHRAVI
rouille noire du blé	Puccinia graminis f. sp. tritici	PUCCGT
rouille noire du chrysanthème	Puccinia chrysanthemi	PUCCCH
rouille noire du dactyle	Puccinia graminis subsp. graminicola	PUCCGM
rouille noire du groseillier	Puccinia ribis	PUCCRI
rouille noire du seigle	Puccinia graminis f. sp. secalis	PUCCGS
rouille noire européenne du framboisier	Phragmidium rubi-idaei	PHRARU
rouille orangée de la patate douce	Coleosporium ipomoeae	COLSIP
rouille orangée du framboisier	Gymnoconia interstitialis	GYMCIN
rouille pâle des ronces	Kuehneola uredinis	KUEHUR
rouille péruvienne de la pomme de terre	Aecidium cantense	AECICT
rouille poudreuse du caféier	Hemileia coffeicola	HEMICO
rouille tordeuse des rameaux du pin	Melampsora pinitorqua	MELMPP
rouille tropicale du maïs	Physopella zeae	PHLLZE
rouille vésiculaire des aiguilles	Melampsorella caryophyllacearum	MELRCA
rouille vésiculaire des aiguilles de l'épicéa	Chrysomyxa ledi var. rhododendri	CHMYRH
rouille vésiculeuse de l'écorce du pin	Cronartium flaccidum	CRONFL
rouille vésiculeuse des aiguilles du pin	Coleosporium tussilaginis	COLSTU
rouille vésiculeuse du chêne	Cronartium fusiforme	CRONFU
rouille vésiculeuse du pin	Cronartium fusiforme	CRONFU
rouille vésiculeuse du pin blanc	Cronartium ribicola	CRONRI

Notes et références

↑ ^{a b c d e f g et h} (de) Julia Marlene Kruse, Faszinierende Pflanzenpilze Erkennen und Bestimmen, Quelle&Meyer, 2019, 528 p. (ISBN 978-3-494-01780-8)
↑ ^{a b et c} Matthew J. Moscou, H. Peter van Esse (2017), The quest for durable resistance Science 22 Dec 2017: Vol. 358, Issue 6370, pp. 1541-1542 DOI: 10.1126/science.aar4797 (résumé
↑ ^{a b c d e f g h i j k l m n o p q et r} (de) Friedemann Klenke & Markus Scholler, Pflanzenparasitische Kleinpilze : Bestimmungsbuch für Brand-, Rost-, Mehltau-, Flagellatenpilze und Wucherlingsverwandte in Deutschland, Österreich, der Schweiz und Südtirol, Berlin, Heidelberg, Springer Spektrum, 2015, 1174 p. (ISBN 978-3-662-46162-4, DOI 10.1007/978-3-662-46162-4)
↑ ^{a b c d e f et g} Georges Viennot-Bourgin, Mildious, oïdiums, caries et charbons, rouilles des plantes de la France, chez Lechevalier, 1956, 350 p. (ISBN 9782720504105)
↑ ^{a b c d et e} Marcel Lecomte, « Les Rouilles », sur Association des mycologues francophones de Belgique (AMFB)
↑ Roger Corbaz, Principes de phytopathologie et de lutte contre les maladies des plantes, Presses polytechniques et universitaires romandes, 1990 (lire en ligne), p. 21
↑ Roger Corbaz, op. cit., p. 23-29
↑ Roger Corbaz, op. cit., p. 31
↑ Roger Corbaz, op. cit., p. 33
↑ Quels traitements naturels utiliser pour un potager bio ? sur le site Bioaddict, consulté en novembre 2011
↑ Guide Clause, 13° édition, 1952, p. 369
↑ Rustica 18/12/2011
↑ ^{a et b} La production des asperges biologiques
↑ Index phytosanitaire ACTA des années 1977, 1985 & 2006 ; Association de coordination technique agricole, Paris
↑ ^{a b c et d} Jacques Barnouin, Ivan Sache et al. (préf. Marion Guillou), Les maladies émergentes : Épidémiologie chez le végétal, l'animal et l'homme, Versailles, Quæ, coll. « Synthèses », 2010, 444 p. (ISBN 978-2-7592-0510-3, ISSN 1777-4624, lire en ligne), I. Facettes et complexité de l'émergence, chap. 2 (« Les maladies émergentes affectant les végétaux »), p. 25, accès libre.
↑ La rouille grillagée du poirier, une maladie disgracieuse
↑ Rouille noire des Graminées

Voir aussi

Articles connexes

[Kruse2019-1] {a b c d e f g et h} (de) Julia Marlene Kruse, Faszinierende Pflanzenpilze Erkennen und Bestimmen, Quelle&Meyer, 2019, 528 p. (ISBN 978-3-494-01780-8)

[Science2017-2] {a b et c} Matthew J. Moscou, H. Peter van Esse (2017), The quest for durable resistance Science 22 Dec 2017: Vol. 358, Issue 6370, pp. 1541-1542 DOI: 10.1126/science.aar4797 (résumé

[Klenke&Scholler2015-3] {a b c d e f g h i j k l m n o p q et r} (de) Friedemann Klenke & Markus Scholler, Pflanzenparasitische Kleinpilze : Bestimmungsbuch für Brand-, Rost-, Mehltau-, Flagellatenpilze und Wucherlingsverwandte in Deutschland, Österreich, der Schweiz und Südtirol, Berlin, Heidelberg, Springer Spektrum, 2015, 1174 p. (ISBN 978-3-662-46162-4, DOI 10.1007/978-3-662-46162-4)

[Viennot-Bourgin1956-4] {a b c d e f et g} Georges Viennot-Bourgin, Mildious, oïdiums, caries et charbons, rouilles des plantes de la France, chez Lechevalier, 1956, 350 p. (ISBN 9782720504105)

[Lecomte-5] {a b c d et e} Marcel Lecomte, « Les Rouilles », sur Association des mycologues francophones de Belgique (AMFB)

[6] Roger Corbaz, Principes de phytopathologie et de lutte contre les maladies des plantes, Presses polytechniques et universitaires romandes, 1990 (lire en ligne), p. 21

[7] Roger Corbaz, op. cit., p. 23-29

[8] Roger Corbaz, op. cit., p. 31

[9] Roger Corbaz, op. cit., p. 33

[10] Quels traitements naturels utiliser pour un potager bio ? sur le site Bioaddict, consulté en novembre 2011

[11] Guide Clause, 13° édition, 1952, p. 369

[12] Rustica 18/12/2011

[asperge-13] {a et b} La production des asperges biologiques

[14] Index phytosanitaire ACTA des années 1977, 1985 & 2006 ; Association de coordination technique agricole, Paris

[quae-15] {a b c et d} Jacques Barnouin, Ivan Sache et al. (préf. Marion Guillou), Les maladies émergentes : Épidémiologie chez le végétal, l'animal et l'homme, Versailles, Quæ, coll. « Synthèses », 2010, 444 p. (ISBN 978-2-7592-0510-3, ISSN 1777-4624, lire en ligne), I. Facettes et complexité de l'émergence, chap. 2 (« Les maladies émergentes affectant les végétaux »), p. 25, accès libre.

[16] La rouille grillagée du poirier, une maladie disgracieuse

[17] Rouille noire des Graminées

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