Rouille (maladie)

maladie cryptogamique

Les rouilles sont un ensemble de maladies cryptogamiques des plantes vasculaires dont les agents pathogènes responsables sont des champignons basidiomycètes (Fungi) de l'ordre des Pucciniales (anciennement Uredinales) et plus largement appartenant à la sous-division des Pucciniomycotina.

Écidies (I) d'Uromyces dactylidis sur la ficaire.
Urédies (II) de Gymnosporangium juniperi-virginianae sur un genévrier.
Urédie (II) de Phragmidium mucronatum sur un églantier.
Écidies (I) de Chrysomyxa abietis sur l'épicéa (Épinette).

Ces champignons phytopathogènes sont des parasites obligatoires biotrophes, ne pouvant se développer que sur un végétal vivant, et dont les espèces sont hautement spécialisées. Elles se manifestent par des taches ou des pustules apparaissant sur les feuilles. Le cycle de vie de ces champignons est complexe : lorsqu'il est complet, il caractérisé par l’émission temporaire et successive de cinq types de spores naissant dans des structures différentes sur des organes annuels comme les feuilles et les tiges, plus rarement sur des organes vivaces comme les troncs ou les racines. Il est également caractérisé par des changements d'hôte souvent très éloignées les uns des autres du point de vue phylogénique, comme par exemple les graminées et les arbres.

Les champignons de la rouille sont très répandus et se rencontrent régulièrement. Ils sont surtout visibles en été et en automne dans leur stade écidie (I) et urédie (II), le plus souvent orange vif. Afin de déterminer l'espèce et le stade de développement, il est souvent indispensable d'utiliser un microscope afin d'étudier les spores. En effet, la classification des champignons de la rouille se base sur leur forme, leur couleur, leur taille et leur ornementation ainsi que la présence ou l'absence de papilles, de pores germinatifs ou de pédoncules. De plus, certaines espèces comme celles du genre Melampsora forment des éléments stériles appelés paraphyses, dont la forme, la taille et l'épaisseur de la paroi sont également importantes pour la détermination[1].

Parmi les espèces à l'impact agricole majeur se trouvent notamment Puccinia graminis, agent de la rouille noire, Puccinia striiformis, agent de la rouille jaune du blé et Puccinia recondita, agent de la rouille brune du blé dont les hôtes principaux sont, pour ces trois espèces, de nombreuses céréales comme le blé, l'orge et l'avoine alors que l'hôte intermédiaire est principalement l'Épine-vinette. Se rencontrent également Uromyces betae, agent de la rouille de la betterave avec pour hôtes uniques la Bette maritime et les betteraves cultivées ; Melampsora lini, agent de la rouille du lin avec pour hôte unique le Lin cultivé ; Puccinia asparagi, agent de la rouille de l'asperge avec pour hôte unique l'Asperge.

Parmi les espèces sauvages communes en Europe occidentale se trouvent par exemple Coleosporium tussilaginis dont l'hôte principal est le tussilage et l'hôte secondaire un pin ; Puccinia lagenophorae dont le cycle de vie a lieu uniquement sur le même hôte comme la pâquerette ou le séneçon commun ; Puccinia malvacearum uniquement sur une Malvacée, Puccinia poarum sur le tussilage comme hôte principal et les graminées du genre Poa comme hôtes intermédiaires et Puccinia taraxaci uniquement sur le pissenlit[1].

Par analogie, certaines maladies dues au genre Albugo, un Oomycètes, sont appelées rouille blanche comme la rouille blanche des crucifères et la rouille blanche de la patate douce. Cependant, elles correspondent à des symptômes différents et à un cycle de vie différent des rouilles dues aux Pucciniales.

Histoire modifier

Écidie (I) d'Uromyces dactylidis sur une feuille de Dactyle aggloméré.

Les rouilles affectent l'agriculture depuis que l'homme a commencé à tenter de dompter les plantes pour les cultiver, en particulier les céréales telles que le blé et l'orge[2].

Des preuves archéologiques démontrent que les cultures de céréales galloromaines étaient constamment touchées par des rouilles et mildious.
Au IVe siècle, les Romains sacrifiaient des bovins roux, des renards et des chiens au dieu Robigus en espérant qu'il éloigne les épidémies de rouilles de céréale des cultures[2].

Ces pathogènes fongiques sont mieux connus et l'on commence à comprendre comment ils peuvent contourner le système immunitaire de la plante via la sécrétion de petites protéines dites « effectrices ». On espère que mieux connaître ces effecteurs et leurs mécanismes permettra de mieux anticiper la propagation mondiale des rouilles du blé[2] et leur adaptation aux pesticides.

Cycle de vie des champignons de la rouille modifier

Le cycle de vie des espèces de champignons agents des rouilles est unique dans le règne fongique. En effet, le développement complet d'une seule espèce comprend souvent jusqu'à cinq stades différents, désignés par des chiffres romains. Cependant certaines espèces raccourcissent leur cycle de développement en supprimant quelques stades. Une autre particularité est le changement d'hôtes qu'effectuent certaines espèces. Les spermogonies (0) et les écidies (I) sont des stades haploïdes formés sur l'hôte intermédiaire et les urédies (II) et les télies (III) sont des stades diploïdes formés sur l'hôte principal. Le changement se fait alors entre des plantes-hôtes souvent très éloignées les unes des autres du point de vue taxonomique, comme par exemple les graminées tel le blé et l'Épine-vinette dans le cas de la rouille noire causée par Puccinia graminis. Le changement d'hôte permet en outre aux champignons de la rouille de coloniser des habitats écologiques totalement différents à l'instar d'une prairie et d'une forêt[1],[3].

Description de chaque phase modifier

Spermogonie modifier

Spermogonies (0) d'Uromyces appendiculatus.

Les spermogonies (0) sont généralement rondes, coniques ou en forme de pustule, de couleur jaune, orange ou foncée, se trouvent régulièrement sur le dessus des feuilles et dégagent souvent des odeurs particulière comme spermatique, douceâtre, moisie, , etc.[1],[3].

Écidie modifier

Écidies (I) de type Aezidium de Puccinia sessilis.

Les écidies (I), qui sont un stade asexué, ont différentes morphologies : type Aecidium, type Caeoma, type Peridermium et type Roestelia. Le type Aecidium est le plus commun ; ses écidies se présentent sous la forme de gobelet ou de tonneau, de couleur jaune orangé, plus rarement blanche. Cette forme est due à une enveloppe protectrice, plus précisément un pseudo-péridium, qui peut être réfléchie à son extrémité et qui est souvent effilochée. Ces structures sont formées sur les organes végétaux les plus divers et peuvent y provoquer des galeries ou des déformations massives. Le type Caeoma qui se retrouve dans le genre Melampsora, est dépourvu de cette marge et n'est protégé que par les tissus de l'hôte. C'est pourquoi ses structures sont en forme de pustule. Il est généralement jaune ou orange. Dans le type Peridermium des genres Coleosporium et Chrysomyxa, les écidies ont un aspect vésiculeux lorsque le péridium est fermé. Le type Roestelia qui se retrouve dans le genre Gymnosporangium présente des écidies orangé brunâtre en forme de corne due à un long pseudo-péridium[1],[3].

Urédie modifier

Urédies (II) de Melampsora caprearum .

Les urédies (II) sont un stade asexué des champignons de la rouille qui peuvent infecter en très peu de temps de grandes surfaces d'une population d'hôtes. Chez les genres très communs Puccinia et Uromyces, les urédies se développent de part et d'autre des feuilles sur des taches foliaires plus ou moins voyantes et bombées, sous forme de pustules brun-cannelle ou brun-rouille, qui se couvrent précocement. Elles sont également disposées en anneau. Mais elles peuvent aussi être jaunâtres à orange vif sous forme de coussinets comme chez Melampsora et Coleosporium ou sous forme de pustules comme chez Pucciniastrum. Les urédies blanches du genre Milesina, dont les hôtes sont des fougères, constituent une particularité. Certaines espèces comme Triphragmium ulmariae produisent des urédies primaires et secondaires qui diffèrent par leurs caractéristiques macroscopiques et microscopiques[1],[3].

Télie modifier

Télies (III) de Phragmidium mucronatum.

Les télies (III), qui constituent un stade sexué du cycle de vie des Pucciniales, sont généralement en forme de sore, de couleur brun noir à brun. Elles sont produites sur les feuilles et les tiges et y provoquent régulièrement des malformations. Mais il existe aussi des formes recouvertes par l'épiderme qui prennent un coloration plomb. Il se trouve également des sores brillantes et croûteuses, rouge foncé comme chez Coleosporium ou orange à brunes comme chez Malanspora. Le genre Cronartium forme des télies étroites, cornées ou filamenteuses, brun foncé ; le genre Gymnosporangium forme des fructifications gélatineuses cornées ou en forme de langue ; le genre Microbotryum, souvent désigné comme faux-charbon, se présente sous forme de masse de spores poussiéreuses noir-violet ou brun clair dans différents organes floraux et plus rarement sur les feuilles et les tiges. En raison de leur aspect charbonneux, il a longtemps été considéré comme un véritables agent du charbon. Les champignons de la rouille hivernent sous forme de téliospores[1],[3].

Baside modifier

Les basides (IV) germent à partir des téliospores et sont reconnaissables à la couche blanchâtre ressemblant à du givre qu'elles forment sur les télies. C'est sur elles que se forment les basidiospores. Il est rare d'observer sur le terrain la formation de basides[1],[3].

Vocabulaire modifier

Lorsqu'une espèce effectue un cycle complet comprenant les stades 0, I, II, III, IV, la rouille est dite macrocycle ; lorsque les urédies (II) font défaut, la rouille est dite hémicyclique et lorsque le cycle ne comporte que des serpomogonies (0) et des télies (III) ou uniquement des télies (III), la rouille est dite microcyclique[4].

Une rouille est autoxène lorsque son cycle biologique s'accomplit sur la même plante-hôte comme Puccinia menthae sur la Menthe des champs, où les stades 0, I, II, III sont présents. Une rouille est hétéroxène lorsque ses écidies (I) se forment sur une plante d'un genre donné tandis que ses autres stades évolutifs apparaissent obligatoirement sur une seconde plante de genre différent du premier comme Puccinia graminis dont les stades 0 et I se font sur l'Épine-vinette et les stades II et III sur le blé[4].

Cycle de vie type modifier

Schéma du cycle de vie de Puccinia graminis.

Au printemps, la basidiospore (IVsp.) issue de la téliospore (IIIsp.) hivernale germe au contact de l’hôte sur lequel elle est transportée par le vent, la pluie ou les insectes. Après infection, le champignon provoque l’apparition d’une tache foliaire. Un filament mycélien haploïde de valence sexuelle - ou + naît directement de la basidiospore qui produit une spermogonie (0) odorante sur le dessus de la feuille. Ses spermaties (0sp.) s'agglutinent dans une gouttelette de miellat qui recouvre l'ostiole qui la surmonte. Les spermaties sont alors transférées par des insectes attirés par le miellat et l'odeur sur un hyphe récepteur proéminent d'une autre spermogonie qui achemine son noyau jusqu'à une protocécidie de valence sexuelle opposée généralement située de l'autre côté sur la face inférieure de la feuille, ce qui provoque sa fertilisation et la transforme en une écidie véritable (I). C'est le début de la dicaryotisation[4],[5].

Le développement, toujours printanier, de l'écidie (I) est très rapide. Protégée par son enveloppe protectrice, elle génère des écidiospores (Isp.) qui contiennent deux noyaux haploïdes. Les espèces pratiquant le changement d'hôte le font principalement lors de la dissémination des écidiospores (Isp.)[4],[5].

Cette écidiospore (Isp.) germe sur la plante et un mycélium se développe rapidement en une urédie (II) qui contient des urédospores (IIsp.). Celles-ci germent directement et généralisent l'infection sur la plante en dispersant la maladie de façon exponentielle[4],[5].

Des télies (III) estivales et automnales en forme de pustules, de coussinets ou de cornes apparaissent sur le mycélium et produisent des spores particulières : les deux noyaux haploïdes jusqu'ici séparés s'unissent pour donner la téliospore (IIIsp.). Elles sont munies d'un pédicelle hyalin et contiennent une ou plusieurs protobasides. C'est la fin de la dicaryotisation. Ce sont ces spores à la paroi renforcée qui permettent au champignon de passer l'hiver[4],[5].

Les protobasides de chaque téliospores germent. Se développent un mycélium court et le noyau de la protobaside qui se divise par méïose en quatre noyau haploïdes pour donner une véritable baside (IV). Elle produit une basidiospore (IVsp.) qui n'est pas capable d'infester l'hôte principal mais qui contamine l'hôte secondaire printanier en étant disséminée par le vent, l'eau ou les insectes[4],[5].

Biologie modifier

Rouille noire du blé : les divers stades.

Les rouilles sont provoquées par des champignons produisant en abondance des spores de 5 à 10 µm de diamètre en moyenne, de couleur claire, hyalines le plus souvent, jaune orangées, légèrement verdâtres ou brunâtres (couleurs caractéristiques à l’origine de la dénomination de ces maladies), parfois mélanisées à des degrés variables, surtout chez les spores de résistance, la mélanine qui indure leur paroi ayant des propriétés antilytiques qui leur permet de passer la mauvaise saison[6].

La plupart des spores sont éjectées dans l'air (autochorie) dans le but de les éloigner « de la colonie mère et de favoriser la dispersion en traversant la zone calme laminaire (quelques millimètres), qui entoure la surface de tout objet, pour tomber dans la zone turbulente. » Les autres facteurs de dispersion sont la distance ; la déposition : les petites spores sont dispersées par le vent (anémochorie, mode de dispersion le plus fréquent, les spores pouvant parcourir des milliers kilomètres) ou les gouttes de pluie (effet splash caractéristique de l'ombrochorie (de)), les plus grosses tombent par gravitation (barochorie) ; l'impaction (en) ; potentiel d'inoculation (vitesse de la germination, abondance de spores, capacité de surmonter les compétiteurs, etc.) qui dépend des réserves nutritives contenues dans la spore[7]. La dispersion des spores par les graines de plantes est plus fréquente qu'on ne l'imagine[8], de même que celle par l'homme (anthropochorie), agent de propagation de plus en plus efficace[9].

Principaux genres européens modifier

  • Chrysomyxa : l'écidie (I) est de type peridermium. Ses écidospores (Isp.), urédospores (IIsp.) et téliospores (IIIsp.) ne sont pas pédonculées et sont formées en chaînes. À l'exception du genre Coleosporium, tous les autres présentent des urédospores (IIsp.) pédonculées. Ce genre présente typiquement un cycle entre les aiguilles ou les cônes de Picea et les Ericaceae. Exemple : Chrysomyxa rhododendri[3].
  • Coleosporium : l'écidie (I) est de type peridermium. les urédospores (IIsp.) sont similaires à celle de Chrysomyxa. La télie (III) est située sous l'épiderme et forme des croûtes cireuses rouge vif. Ce genre présente typiquement un cycle entre les aiguilles de Pinus et des angiospermes, surtout des Astéracées. Exemple : Coleosporium asterum[3].
  • Cronartium : l'écidie (I) est de type peridermium. L'urédie (II) présente un péridium et la télie (III) forme des colonnes. Ce genre présente typiquement un cycle entre le tronc et les rameaux de Pinus et divers angiospermes. Exemple : Cronartium ribicola[3].
  • Gymnosporangium : l'écidie (I) est de type Roestelia. La spermogonie (0) et l'écidie (I) sont remarquables. les écidiospores (Isp.) sont grandes et présentent une paroi épaisse et des pores germinatifs évidents. L'urédie (II) ne se forme pas, à une exception près. La télie (III) est grande, orange vif à rougeâtre, gélatineuse et gonfle à l'humidité. Les téliospores (IIIsp.) présentent un long pétiole et deux cellules. Elles germent immédiatement. Ce genre présente typiquement un cycle entre l'écidie (I) du début de l'été à l'automne sur les feuilles ou fruits des fruitiers à pépins et la télie (III) au printemps sur les troncs, rameaux ou aiguilles de Juniperus. Exemple : Gymnosporangium clavariiforme[3].
  • Melampsora : l'écidie (I) est de type Caeoma. L'urédie (II) est orange clair. la télie (III) forme des croûtes sous l'épiderme. Ce genre présente typiquement un cycle entre divers gymnospermes ou angiospermes et des Salicaceae comme les Peupliers ou les Saules. Quelsues espèces sur gymnospermes ne changent pas d'hôte. Exemple : Melampsora euonymi-caprearum[3].
  • Melampsoridium : l'écidie (I) est de type péridermium. L'urédie (II) présente un péridium et des pores ouverts. Les urédospres (IIsp.) sont incolores et à pores germinaux. La télie (III) est située sous l'épiderme. Ce genre présente typiquement un cycle entre les aiguilles de Mélèze et les Betulaceae. Exemple : Melampsoridium carpini[3].
  • Milesina : l'écidie (I) est de type péridermium. L'urédie (II) présente un péridium. Les urédospores (IIsp.) ont un pédoncule court et une paroi incolore. Les téliospores (IIIsp.) sont sans pédoncule et multicelulaires avec des parois verticales. Ce genre présente typiquement un cycle entre les aiguilles de Sapins Abies et les fougères. Exemple : Milesina dieteliana sur Polypodium[3].
  • Phragmidium : l'écidie (I) est de type Caeoma et présente comme l'urédie (II) des paraphyses incolores. Leurs spores (Isp. et IIsp.) sont verruqueuses. La télie (III) est généralement noire et les téliospores (IIIsp.) ont un long pédoncule et sont multicellulaires. Ce genre se développe sur des Rosacées sans effectuer de changement d'hôte. Exemple : Phragmidium mucronatum sur Rosa canina[3].
  • Puccinia : l'écidie (I) est de type aecidium. Les urédospores (IIsp.) présentent des pores germinaux. Les téliospores (IIIsp.) sont pédonculées, généralement à 2 cellules, nettement épaissies au sommet et présentent un pore germinatif par cellule. Tous les stades de développement sont répandus sur de nombreux angiospermes. Exemple : Puccinia pulverulenta sur Epilobium hirsutum[3].
  • Pucciniastrum : l'écidie (I) est de type péridermium. L'urédie (II) est située au dessus de l'épiderme et présente une péridie. La télie (III) produit des croûtes sous-épidermiques. Les téliospores (IIIsp.) sont serrés les unes contre les autres et présentent deux à plusieurs cellules cloisonnées. Ce genre présente typiquement un cycle entre les aiguilles de sapin et les Onagraceae ou les Ericaceae. Exemple : Pucciniastrum areolatum[3].
  • Tranzschelia : l'écidie (I) est de type aecidium. Les urédospores présentent (IIsp.) une paroi lisse épaissie au sommet. Les téliospores (IIIsp.) se présentent par deux et sont semblables à celles de Puccinia, mais se séparent légèrement. Leur paroi est généralement verruqueuse ou épineuse. Ce genre se trouve sur les Renonculacées sur lesquelles il effectue un cycle complet ou change d'hôtes avec les fruitiers à noyau. Exemple : Tranzschelia discolor sur Prunus domestica[3].
  • Uromyces : similaire au genre Puccinia, mais produit des téliospores (IIIsp.) à une seule cellule. Exemple : Uromyces ficariae[3].

Traitements modifier

Les moyens de lutte contre les rouilles furent longtemps cantonnés à la tentative d'éradication des hôtes écidiens.

Traitements naturels modifier

Le traitement classique consiste à supprimer puis brûler les feuilles atteintes et à pulvériser préventivement de la bouillie bordelaise ou avec une décoction de prêle, qui est aussi curative et utilisée en potager bio[10],[11],[12].

La méthode de lutte en agriculture biologique consiste à planter des cultivars résistants ou, à défaut, d'augmenter la distance entre les rangées de plants et d'orienter celles-ci pour que l'humidité stagnante soit limitée par une exposition judicieuse aux vents dominants[13].

Traitements phytosanitaires modifier

L'arsenal phytopharmaceutique actuel est plus efficace avec les molécules[14]:

Note: Certains de ces produits ne sont plus autorisés à la vente en Europe, et ne peuvent l'être que sur certaines espèces cultivées.

Liste des maladies appelées « rouilles » en français modifier

Nom de la maladie Agent pathogène code OEPP
fausse rouille du mûrier Mycosphaerella mori MYCOMO
rouille américaine du groseillier Endocronartium pini ENDCPI
rouille américaine du soja Phakopsora meibomiae PHAKME
rouille asiatique du groseillier Cronartium ribicola CRONRI
rouille asiatique du soja Phakopsora pachyrhizi PHAKPA
rouille blanche de la patate douce Albugo ipomoeae-panduratae ALBUIP
rouille blanche de la scorsonère Albugo tragopogonis ALBUTR
rouille blanche de l'épinard Albugo occidentalis ALBUOC
rouille blanche des composées Albugo tragopogonis ALBUTR
rouille blanche des crucifères Albugo candida ALBUCA
rouille blanche du chrysanthème Puccinia horiana PUCCHN
rouille blanche du salsifis Albugo tragopogonis ALBUTR
rouille blanche du tournesol Albugo tragopogonis ALBUTR
rouille brune Puccinia recondita PUCCRE
rouille brune de l'orge Puccinia hordei PUCCHD
rouille brune du blé Puccinia triticina PUCCRT
rouille brune du chrysanthème Puccinia chrysanthemi PUCCCH
rouille brune du haricot Uromyces appendiculatus UROMAP
rouille brune du seigle Puccinia recondita f. sp. recondita PUCCRR
rouille commune de la pomme de terre Puccinia pittieriana PUCCPT
rouille commune du chrysanthème Puccinia chrysanthemi PUCCCH
rouille commune du trèfle Uromyces trifolii UROMTR
rouille courbeuse des rameaux du pin Melampsora pinitorqua MELMPP
rouille couronnée de la bourdaine Puccinia coronata f. sp. calamagrostidis PUCCCM
rouille couronnée de la fétuque Puccinia coronata f. sp. festucae PUCCCF
rouille couronnée de l'agrostide Puccinia coronata f. sp. agrostidis PUCCCG
rouille couronnée de l'avoine Puccinia coronata PUCCCO
rouille couronnée de l'avoine Puccinia coronata f. sp. avenae PUCCCA
rouille couronnée des graminées Puccinia coronata PUCCCO
rouille couronnée du ray-grass Puccinia coronata f. sp. lolii PUCCCL
rouille couronnée du vulpin Puccinia coronata f. sp. alopecuri PUCCCC
rouille crustacée du framboisier Pucciniastrum americanum PUCIAM
rouille de la betterave Uromyces betae UROMBE
rouille de la bruyère Thekopsora fischeri THEKFI
rouille de la canne à sucre Puccinia kuehnii PUCCKU
rouille de la canne à sucre Puccinia melanocephala PUCCML
rouille de la chicorée Puccinia hieracii PUCCHI
rouille de la cinéraire Coleosporium tussilaginis f. sp. senecionis COLSSE
rouille de la crotalaire Uromyces decoratus UROMDE
rouille de la fétuque Uromyces dactylidis UROMDA
rouille de la feuille du caféier Hemileia vastatrix HEMIVA
rouille de la fève Uromyces viciae-fabae UROMVF
rouille de la laitue Puccinia hieracii PUCCHI
rouille de la luzerne Uromyces striatus UROMST
rouille de la menthe Puccinia menthae PUCCME
rouille de la pivoine Cronartium flaccidum CRONFL
rouille de la raiponce Coleosporium tussilaginis COLSCP
rouille de la reine des prés Triphragmium ulmariae TPHRUL
rouille de la rhubarbe Puccinia phragmitis PUCCPH
rouille de la scabieuse Puccinia verruca PUCCVE
rouille de la tige Puccinia graminis PUCCGR
rouille de la tige de l'airelle Pucciniastrum goeppertianum PUCIGO
rouille de la tige de l'avoine Puccinia graminis f. sp. avenae PUCCGA
rouille de la tige de l'orge Puccinia graminis f. sp. secalis PUCCGS
rouille de la tige du blé Puccinia graminis f. sp. tritici PUCCGT
rouille de la tige du mil Puccinia graminis subsp. graminicola PUCCGM
rouille de la tige du seigle Puccinia graminis f. sp. secalis PUCCGS
rouille de la vigne Phakopsora euvitis PHLLAM
rouille de l'abricotier Tranzschelia pruni-spinosae TRANPS
rouille de l'ail Puccinia allii PUCCAL
rouille de l'aloès Uromyces aloes UROMAL
rouille de l'amandier Melampsora amygdalinae MELMAM
rouille de l'amandier Tranzschelia pruni-spinosae TRANPS
rouille de l'anémone pulsatille Coleosporium tussilaginis f. sp. pulsatillae COLSPU
rouille de l'arachide Puccinia arachidis PUCCAR
rouille de l'asperge Puccinia asparagi[13] PUCCAS
rouille de l'aster Puccinia asteris PUCCAT
rouille de l'aubépine Gymnosporangium clavariiforme GYMNCF
rouille de l'aubépine Gymnosporangium confusum GYMNCO
rouille de l'aubépine Gymnosporangium globosum GYMNGL
rouille de l'aubergine Puccinia substriata PUCCSU
rouille de l'endive Puccinia hieracii PUCCHI
rouille de l'épilobe du feu sur sapin Pucciniastrum epilobii f. sp. abieti-chamaenerii PUCIEA
rouille de l'hortensia Pucciniastrum hydrangeae PUCIHY
rouille de l'œillet Puccinia arenariae PUCCAE
rouille de l'œillet Uromyces dianthi UROMDI
rouille de l'Oregon des rosacées Gymnosporangium juniperinum GYMNJU
rouille de Plowright du poirier Gymnosporangium confusum GYMNCO
rouille de Virginie du poirier Gymnosporangium globosum GYMNGL
rouille de Virginie du pommier Gymnosporangium juniperi-virginianae GYMNJV
rouille des aiguilles de l'épicéa Chrysomyxa abietis CHMYAB
rouille des aiguilles de l'épicéa Chrysomyxa weirii CHMYWE
rouille des alliacées sur peuplier Melampsora allii-populina MELMAP
rouille des arbres fruitiers à noyau Tranzschelia pruni-spinosae TRANPS
rouille des euphorbiacées Melampsora ricini MELMRI
rouille des feuilles de bouleau Melampsoridium betulinum MELDBE
rouille des feuilles du blé Puccinia triticina PUCCRT
rouille des feuilles du cotonnier Puccinia schedonnardi PUCCSC
rouille des feuilles du mûrier Mycosphaerella mori MYCOMO
rouille des feuilles du peuplier Melampsora medusae MELMME
rouille des feuilles du seigle Puccinia recondita f. sp. recondita PUCCRR
rouille des iris Puccinia iridis PUCCIR
rouille des malvacées Puccinia malvacearum [15] PUCCMA
rouille des nervures du trèfle Uromyces striatus UROMST
rouille des ombellifères Puccinia pimpinellae PUCCPI
rouille des rameaux du pin Cronartium filamentosum CRONFI
rouille des rosacées Phragmidium tuberculatum PHRATU
rouille du balisier Puccinia thaliae PUCCTH
rouille du bananier Uromyces musae UROMMU
rouille du buis Puccinia buxi
rouille du caféier Hemileia vastatrix HEMIVA
rouille du carthame Puccinia carthami PUCCCR
rouille du carvi Puccinia bistortae PUCCCB
rouille du céleri Puccinia apii PUCCAP
rouille du cerisier Puccinia cerasi PUCCCE
rouille du cerisier Pucciniastrum areolatum PUCIAR
rouille du chrysanthème Puccinia chrysanthemi [15] PUCCCH
rouille du cognassier Gymnosporangium clavipes GYMNCL
rouille du collet Puccinia coronata PUCCCO
rouille du cotonnier Phakopsora gossypii PHAKGO
rouille du cotonnier Puccinia cacabata PUCCSK
rouille du crocus Puccinia croci PUCCCI
rouille du crocus Uromyces croci UROMCR
rouille du cytise Uromyces laburni UROMLA
rouille du cytise Uromyces laburni f. sp. genistae-tinctoriae UROMLG
rouille du dactyle Uromyces dactylidis UROMDA
rouille du dolique Uromyces dolicholi UROMDO
rouille du figuier Cerotelium fici KUEHFI
rouille du framboisier Phragmidium rubi-idaei PHRARU
rouille du fuchsia Pucciniastrum epilobii PUCIEP
rouille du fuchsia Pucciniastrum epilobii f. sp. palustris PUCIEL
rouille du fusain sur saule marsault Melampsora epitea f. sp. euonymi-capraearum MELMEP
rouille du genêt d'Angleterre Uromyces laburni f. sp. anglicae UROMLN
rouille du genêt des teinturiers Uromyces laburni f. sp. genistae-tinctoriae UROMLG
rouille du genévrier Gymnosporangium juniperi-virginianae GYMNJV
rouille du géranium Uromyces geranii UROMGE
rouille du glaïeul Puccinia gladioli PUCCGL
rouille du glaïeul Uromyces gladioli UROMGL
rouille du glaïeul Uromyces transversalis [15] UROMTV
rouille du goyavier Puccinia psidii PUCCPS
rouille du grand chiendent Puccinia cynodontis PUCCCY
rouille du groseillier Puccinia ribis PUCCRI
rouille du groseillier sur l'osier Melampsora ribesii-viminalis MELMRV
rouille du haricot Uromyces appendiculatus UROMAP
rouille du laiteron Coleosporium tussilaginis f. sp. sonchi COLSSO
rouille du lin Melampsora lini MELMLI
rouille du lin Melampsora lini var. liniperda MELMLL
rouille du mahonia Uropyxis mirabilissima CUMMMI
rouille du maïs Puccinia polysora PUCCPY
rouille du maïs Puccinia sorghi PUCCSO
rouille du manioc Uromyces manihotis UROMMA
rouille du mélèze sur peuplier Melampsora larici-populina MELMLP
rouille du millet Puccinia substriata PUCCSU
rouille du muflier des jardins Puccinia antirrhini [15] PUCCAN
rouille du mûrier Cerotelium fici KUEHFI
rouille du néflier Gymnosporangium confusum GYMNCO
rouille du pâturin Puccinia poarum PUCCPR
rouille du pâturin Uromyces dactylidis var. poae UROMDP
rouille du pêcher Puccinia cerasi PUCCCE
rouille du pêcher Tranzschelia discolor TRANDI
rouille du pêcher Tranzschelia pruni-spinosae TRANPS
rouille du pélargonium Puccinia pelargonii-zonalis PUCCPZ
rouille du pélargonium zonal Puccinia pelargonii-zonalis PUCCPZ
rouille du persil Puccinia nitida PUCCNI
rouille du persil Puccinia rubiginosa PUCCRU
rouille du peuplier Melampsora larici-populina MELMLP
rouille du peuplier Melampsora populnea MELMPO
rouille du peuplier sur la mercuriale Melampsora rostrupii MELMPR
rouille du peuplier sur le mélèze Melampsora larici-tremulae MELMPL
rouille du pin Cronartium comandrae CRONCO
rouille du pin à cinq feuilles Cronartium ribicola CRONRI
rouille du pin du Lord Cronartium ribicola CRONRI
rouille du pin Weymouth Cronartium ribicola CRONRI
rouille du pistachier Pileolaria terebinthi UROMTE
rouille du poireau Puccinia porri PUCCPO
rouille du poirier japonais Gymnosporangium asiaticum GYMNAS
rouille du poirier japonais Gymnosporangium haraeanum GYMNHA
rouille du pois Uromyces pisi UROMPS
rouille du pois Uromyces viciae-fabae UROMVF
rouille du pois à vache Uromyces vignae UROMVI
rouille du pois cajan Uredo cajani UREDCA
rouille du pois-chiche Uromyces ciceris-arietini UROMCA
rouille du prunier Tranzschelia pruni-spinosae TRANPS
rouille du rhododendron Chrysomyxa ledi var. rhododendri CHMYRH
rouille du ricin Melampsora ricini MELMRI
rouille du roseau Puccinia phragmitis PUCCPH
rouille du rosier Phragmidium mucronatum PHRAMU
rouille du salsifis Puccinia jackyana PUCCJA
rouille du sapin Pucciniastrum goeppertianum PUCIGO
rouille du sarrasin Coleosporium tussilaginis f. sp. melampyri COLSME
rouille du saule argenté Melampsora salicis-albae MELMSA
rouille du soja Phakopsora pachyrhizi PHAKPA
rouille du sorgho Puccinia purpurea PUCCPU
rouille du teck Olivea tectonae OLIVTE
rouille du tournesol Puccinia helianthi PUCCHE
rouille du trèfle Uromyces trifolii UROMTR
rouille écidienne du groseillier Puccinia caricina var. pringsheimiana PUCCCP
rouille écidienne du groseillier Puccinia ribesii-caricis PUCCRC
rouille en colonnettes du cassissier Cronartium ribicola CRONRI
rouille européenne du poirier Gymnosporangium sabinae GYMNFU
rouille européenne du pommier Gymnosporangium juniperinum GYMNJU
rouille européenne du pommier Gymnosporangium tremelloides GYMNTR
rouille grillagée du poirier Gymnosporangium sabinae[16] GYMNFU
rouille grillagée du pommier Gymnosporangium juniperinum GYMNJU
rouille grillagée du pommier Gymnosporangium tremelloides GYMNTR
rouille grise de la feuille du caféier Hemileia coffeicola HEMICO
rouille japonaise du chrysanthème Puccinia horiana PUCCHN
rouille japonaise du pommier Gymnosporangium yamadae GYMNYA
rouille jaune de l'orge Puccinia striiformis PUCCST
rouille jaune des graminées Puccinia striiformis PUCCST
rouille jaune du blé Puccinia striiformis PUCCST
rouille jaune du dactyle Puccinia striiformis var. dactylidis PUCCSD
rouille jaune du framboisier Phragmidium rubi-idaei PHRARU
rouille jaune du pâturin Puccinia brachypodii var. poae-nemoralis PUCCBP
rouille jaune du pâturin Puccinia striiformis PUCCST
rouille jaune du seigle Puccinia striiformis PUCCST
rouille jaune striée de l'orge Puccinia striiformis PUCCST
rouille jaune striée du blé Puccinia striiformis PUCCST
rouille jaune tardive du framboisier Pucciniastrum americanum PUCIAM
rouille linéaire des céréales Puccinia graminis PUCCGR
rouille naine de l'orge Puccinia hordei PUCCHD
rouille naine des feuilles de l'orge Puccinia hordei PUCCHD
rouille noire Puccinia graminis[17] (Ug99) PUCCGR
rouille noire de la fléole Puccinia graminis subsp. graminicola PUCCGM
rouille noire de l'agrostide Puccinia graminis subsp. graminicola PUCCGM
rouille noire de l'avoine Puccinia graminis f. sp. avenae PUCCGA
rouille noire des céréales Puccinia graminis PUCCGR
rouille noire des ronces Phragmidium bulbosum PHRABU
rouille noire des ronces Phragmidium violaceum PHRAVI
rouille noire du blé Puccinia graminis f. sp. tritici PUCCGT
rouille noire du chrysanthème Puccinia chrysanthemi PUCCCH
rouille noire du dactyle Puccinia graminis subsp. graminicola PUCCGM
rouille noire du groseillier Puccinia ribis PUCCRI
rouille noire du seigle Puccinia graminis f. sp. secalis PUCCGS
rouille noire européenne du framboisier Phragmidium rubi-idaei PHRARU
rouille orangée de la patate douce Coleosporium ipomoeae COLSIP
rouille orangée du framboisier Gymnoconia interstitialis GYMCIN
rouille pâle des ronces Kuehneola uredinis KUEHUR
rouille péruvienne de la pomme de terre Aecidium cantense AECICT
rouille poudreuse du caféier Hemileia coffeicola HEMICO
rouille tordeuse des rameaux du pin Melampsora pinitorqua MELMPP
rouille tropicale du maïs Physopella zeae PHLLZE
rouille vésiculaire des aiguilles Melampsorella caryophyllacearum MELRCA
rouille vésiculaire des aiguilles de l'épicéa Chrysomyxa ledi var. rhododendri CHMYRH
rouille vésiculeuse de l'écorce du pin Cronartium flaccidum CRONFL
rouille vésiculeuse des aiguilles du pin Coleosporium tussilaginis COLSTU
rouille vésiculeuse du chêne Cronartium fusiforme CRONFU
rouille vésiculeuse du pin Cronartium fusiforme CRONFU
rouille vésiculeuse du pin blanc Cronartium ribicola CRONRI

Notes et références modifier

  1. a b c d e f g et h (de) Julia Marlene Kruse, Faszinierende Pflanzenpilze Erkennen und Bestimmen, Quelle&Meyer, , 528 p. (ISBN 978-3-494-01780-8)
  2. a b et c Matthew J. Moscou, H. Peter van Esse (2017), The quest for durable resistance Science 22 Dec 2017: Vol. 358, Issue 6370, pp. 1541-1542 DOI: 10.1126/science.aar4797 (résumé
  3. a b c d e f g h i j k l m n o p q et r (de) Friedemann Klenke & Markus Scholler, Pflanzenparasitische Kleinpilze : Bestimmungsbuch für Brand-, Rost-, Mehltau-, Flagellatenpilze und Wucherlingsverwandte in Deutschland, Österreich, der Schweiz und Südtirol, Berlin, Heidelberg, Springer Spektrum, , 1174 p. (ISBN 978-3-662-46162-4, DOI 10.1007/978-3-662-46162-4)
  4. a b c d e f et g Georges Viennot-Bourgin, Mildious, oïdiums, caries et charbons, rouilles des plantes de la France, chez Lechevalier, , 350 p. (ISBN 9782720504105)
  5. a b c d et e Marcel Lecomte, « Les Rouilles », sur Association des mycologues francophones de Belgique (AMFB)
  6. Roger Corbaz, Principes de phytopathologie et de lutte contre les maladies des plantes, Presses polytechniques et universitaires romandes, (lire en ligne), p. 21
  7. Roger Corbaz, op. cit., p. 23-29
  8. Roger Corbaz, op. cit., p. 31
  9. Roger Corbaz, op. cit., p. 33
  10. Quels traitements naturels utiliser pour un potager bio ? sur le site Bioaddict, consulté en novembre 2011
  11. Guide Clause, 13° édition, 1952, p. 369
  12. Rustica 18/12/2011
  13. a et b La production des asperges biologiques
  14. Index phytosanitaire ACTA des années 1977, 1985 & 2006 ; Association de coordination technique agricole, Paris
  15. a b c et d Jacques Barnouin, Ivan Sache et al. (préf. Marion Guillou), Les maladies émergentes : Épidémiologie chez le végétal, l'animal et l'homme, Versailles, Quæ, coll. « Synthèses », , 444 p. (ISBN 978-2-7592-0510-3, ISSN 1777-4624, lire en ligne), I. Facettes et complexité de l'émergence, chap. 2 (« Les maladies émergentes affectant les végétaux »), p. 25, accès libre.
  16. La rouille grillagée du poirier, une maladie disgracieuse
  17. Rouille noire des Graminées

Voir aussi modifier

Articles connexes modifier